原代细胞是直接取自活组织的细胞，并用于体表成长。这些细胞经历了极度少的群体倍增，因而与陆续(肿瘤某人为永生化)细胞系相比，它们更能代表它们所衍生组织的重要职能成分，使得原代细胞成为更具代表性的体内模型。
原代细胞分离是指将组织分散造成细胞悬液后从中获取主张细胞的过程，获得高纯度、高活性的原代细胞则是好多细胞尝试成功的关键身分之一，原代细胞分离的步骤有好多种：悬浮离心法、直接组织块法、酶消化法、非酶消化法、机械分散法等。
人或动物体内(或胚胎组织)由于多种细胞结合缜密，不利于各个细胞在体表造就中成长滋生，即便选取1mm3 的组织块，也只有少量处于周边的细胞可能生计和成长，若需获取大量细胞，必须将现有的组织块充分散开，使细胞解离出来，常选取的步骤如下：
一、悬浮细胞的分离步骤
组织资料若来自血液、羊水、胸水或腹水的悬液资料，最单一的步骤是选取1000r/min的低速离心10分钟。经离心后由于各类细胞的比沉分歧可在分层液中形成分歧层，这样可凭据必要收成主张细胞。
二、实体组织资料的分离步骤
对于实体组织资料，由于细胞间结合缜密，为了使组织中的细胞充分分散，形成细胞悬液，可选取机械分散法(物理裂解)和消化分离法。
(一)机械分散法
所取资料若纤维成分很少，如脑组织，部门胚胎组织可选取剪刀剪怯注用吸管奏乐分散组织细胞或将已充分剪碎分散的组织放在注射器内(用九号针)，使细胞通过针头压出，或在不锈钢纱网内用钝物压挤(常用注射器钝端)使细胞从网孔中压挤出。此法分离细胞固然轻便、急剧，但对组织机械危险大，并且细胞分散成效差。此法仅合用于处置纤维成分少的软组织。
(二)消化分离法
组织消化法是把组织剪切成较幼团块(或糊状)，利用酶的生化作用和非酶的化学作用进一步使细胞间的桥连结构松动，使团块膨松，由块状造成絮状，此时再选取机械法，用吸管奏乐分散或电磁搅拌或在摇珠瓶中振荡，使细胞团块得以较充分的分散，造成少量细胞群团和大量单个细胞的细胞悬液，接种造就后，细胞容易贴壁成长。
消化分离法的操作步骤
1)剪切把组织块剪碎，呈 1~5mm3 大幼的组织块。
2) 加液漂洗 将碎组织块在平皿(或三角烧瓶)中用无钙镁 PBS 洗 2-3 次(选取倾斜，天然沉降法)。
3)消化 参与消化液 (胰蛋白酶或胶原酶或 EDTA )于 37℃水浴中作用适其功夫 (中央可轻摇 1~2 次)，若组织块膨松呈絮状可终止，若变动不大可更换一次消化液，持续消化直至膨松絮状为止。胰蛋白酶消化功夫不宜过长。
4)弃去消化液 选取倾斜天然沉降或低速离心法尽量弃去消化液。
5)漂洗 将含有钙、镁离子的造就基沿瓶壁缓缓参与，遏制消化反映，选取漂洗法洗 2-3 次后，参与齐全造就基。
6)机械分散 选取吸管奏乐或振荡法，使细胞充分散开后用纱网或 3~4 层无菌纱布过滤后吩炜造就，若要求不高可选取倾斜天然沉降 5~10 分钟，吸上层细胞悬液进行吩炜造就。
当苦衷项如下
1)组织块必须漂洗 2-3 次以除去组织中的钙、镁离子和血清对胰蛋白酶和 EDTA 的抑造作用。
2)胰蛋白浓度不宜过高，作用功夫不能太长，以预防毒性作用。
3)消化后组织不仅要尽量弃去消化液，以预防毒性产生，并且作为要轻，以预防膨松的细胞随漂洗而迷失
三、酶消化法
1）无菌
确保使用无菌设备、试剂和技术网络和处置组织。使用幼我防护设备以预防传染。使用0.22微米的膜无菌过滤所有酶和试剂。
2）切块
用无菌剪刀或手术刀将组织标本切成幼块(通常为2×4mm)，而后将幼块放入选定的缓冲液、造就基或盐溶液中。
3）加酶
将组织洗濯三次以解除有余的血液蛋白，而后参与您选择的酶如胶原酶、蛋白酶、木瓜蛋白酶或胰蛋白酶。通常，约0.5 mg/ml～1.5mg/ml的酶。
4）孵育
将组织样本在其最佳温度下孵育，通常在37℃下孵育30～90分钟。定期混合或轻轻摇荡标本。
5）洗涤
通过轻轻移液来分散细胞(也称为研磨)，而后，使用细网过滤细胞悬浮液。让细胞沉淀并滗出有余的含液酶;洗两到三次。含有FBS，BSA或其他抑造剂的洗涤溶液也可用于阻止酶消化。
6）分析
将细胞沉悬于正确的造就基或缓冲液中，而后定量测定细胞产量和活力。这是细胞分离过程中的沉要步骤，因而您能够评估解离技术的了局。大无数钻研人员使用血细胞计数器测定细胞产量，并使用台盼蓝沉氮染料丈量细胞活力。
7）造就
凭据所分离的细胞来选择最适合钻研的规划和处置步骤来造就细胞。
沉点当苦衷项
①使用细胞分离酶时，请把稳温度和湿度前提。如蛋白水解酶能够自动分化，因而建议在使用前立即将其溶化，并在冰上保留2℃～8℃。
②通常用于细胞分离的大无数酶能够直接溶化于平衡盐溶液或所选缓冲液中。对于很多细胞分离中，确保解离期间的组织存活，必要孵育造就基充分氧化并在生理pH下缓冲。95%O2、5%CO2平衡的介质来实现。
